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當(dāng)發(fā)現(xiàn)細(xì)胞被細(xì)菌污染后,可以嘗試以下處理方法:
1. 革蘭氏染色法
① 操作過程:首先,制作細(xì)胞涂片,自然干燥后,通過火焰固定。然后用結(jié)晶紫初染 1 - 2 分鐘,水洗后加碘液媒染 1 分鐘,再用 95% 乙醇脫色約 30 秒(具體時間可根據(jù)涂片的實際情況調(diào)整),最后用番紅復(fù)染 1 - 2 分鐘。水洗、干燥后在顯微鏡下觀察。
② 判斷依據(jù):如果細(xì)菌被染成紫色,為革蘭氏陽性菌;如果被染成紅色,則為革蘭氏陰性菌。這一步很關(guān)鍵,因為不同類型的細(xì)菌對不同抗生素的敏感性不同,革蘭氏染色可以為后續(xù)選擇合適的抗生素提供參考。
1. 選擇抗生素
① 針對革蘭氏陽性菌:可以選擇青霉素、鏈霉素、紅霉素等。例如,青霉素能夠抑制細(xì)菌細(xì)胞壁的合成,對革蘭氏陽性菌有較好的抗菌效果。使用濃度一般為 10 - 100 U/mL(青霉素)、10 - 100μg/mL(鏈霉素)、0.3 - 3μg/mL(紅霉素),具體濃度可以根據(jù)抗生素的說明書和細(xì)胞對藥物的耐受性進(jìn)行調(diào)整。
② 針對革蘭氏陰性菌:常用慶大霉素、卡那霉素、氯霉素等。慶大霉素能與細(xì)菌核糖體 30S 亞基結(jié)合,阻斷細(xì)菌蛋白質(zhì)合成,對革蘭氏陰性菌抗菌活性較強(qiáng)。使用濃度通常為 10 - 100μg/mL(慶大霉素)、10 - 100μg/mL(卡那霉素)、10 - 100μg/mL(氯霉素)。
2. 處理步驟
① 配制含抗生素的培養(yǎng)基:將選擇好的抗生素加入到新鮮的細(xì)胞培養(yǎng)基中,充分混勻。需要注意的是,抗生素的加入可能會對細(xì)胞本身產(chǎn)生一定的影響,所以要盡量選擇對細(xì)胞毒性較小的抗生素,并通過預(yù)實驗確定合適的濃度。
② 更換培養(yǎng)基并培養(yǎng)細(xì)胞:小心地棄去被污染的培養(yǎng)基,用 PBS 緩沖液輕輕洗滌細(xì)胞 1 - 2 次,以去除部分細(xì)菌和殘留的污染培養(yǎng)基。然后加入含抗生素的新鮮培養(yǎng)基,將細(xì)胞放回培養(yǎng)箱繼續(xù)培養(yǎng)。在培養(yǎng)過程中,要密切觀察細(xì)胞的狀態(tài),如細(xì)胞的形態(tài)、生長速度等。
1. 多次洗滌和換液
① 除了使用抗生素處理外,還可以通過多次用無菌的 PBS 緩沖液洗滌細(xì)胞來減少細(xì)菌數(shù)量。一般可以進(jìn)行 3 - 5 次洗滌,每次洗滌后更換新的含抗生素培養(yǎng)基。這樣可以逐漸清除細(xì)菌及其代謝產(chǎn)物,減輕對細(xì)胞的不良影響。
2. 聯(lián)合使用抗生素和其他方法
① 例如,在使用抗生素的同時,可以適當(dāng)降低培養(yǎng)溫度。因為有些細(xì)菌在較低溫度下生長速度會減慢,而細(xì)胞在一定程度上能夠耐受較低的溫度。如將培養(yǎng)溫度從 37℃降低到 30℃ - 32℃,持續(xù)一段時間,配合抗生素處理,可能會更有效地清除細(xì)菌。
1. 復(fù)蘇
① 當(dāng)細(xì)胞在含抗生素的培養(yǎng)基中培養(yǎng)一段時間后,細(xì)菌污染得到控制,細(xì)胞狀態(tài)逐漸恢復(fù)正常。此時,可以將細(xì)胞消化下來,用正常的培養(yǎng)基(不含抗生素)進(jìn)行稀釋,然后接種到新的培養(yǎng)瓶中。
2. 驗證無污染
① 在細(xì)胞復(fù)蘇并培養(yǎng)幾代后,要通過多種方法驗證細(xì)胞是否真正清除了細(xì)菌污染。可以再次進(jìn)行顯微鏡觀察,確保沒有細(xì)菌存在;也可以使用一些快速檢測試劑盒進(jìn)行檢測,如細(xì)菌培養(yǎng)檢測試劑盒,將細(xì)胞培養(yǎng)上清液接種到特定的細(xì)菌培養(yǎng)基中,觀察是否有細(xì)菌生長,以確認(rèn)細(xì)胞已經(jīng)wan全恢復(fù)正常。
不過需要注意的是,細(xì)胞被細(xì)菌污染后,成功挽救的概率相對較低,為了確保實驗結(jié)果的準(zhǔn)確性,一般建議如果細(xì)胞被細(xì)菌污染嚴(yán)重,最好重新獲取細(xì)胞進(jìn)行培養(yǎng)。